Respuesta del tiempo de imbibición de semillas de tres patrones de cítricos con diferentes concentraciones de Pectimorf® en la germinación

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María Gabriela Yánez Galarza
Bienvenido Máximo Vera Tumbaco

Resumen

Encontrar métodos de germinación más seguras es fundamental en cítricos, por lo que la presente investigación tuvo el objetivo de evaluar la respuesta del tiempo de imbibición de semillas de tres patrones de cítricos con diferentes concentraciones de Pectimorf® en la germinación. Se implementó en laboratorio un experimento, con dos factores de estudio: Factor A: semilla de patrones (A1: mandarina Cleopatra, A2: limón rugoso, A3: lima mandarina) y Factor B: concentración de oligosacáridos pécticos (B1: 0 mgL-1, B2: 5 mgL-1, B3: 10 mgL-1, B4: 20 mgL-1). Los tratamientos se distribuyeron en un diseño experimental Completamente Aleatorio (DCA) en arreglo factorial 3x4, con 12 tratamientos. Se evaluó el porcentaje de germinación (PDG), peso húmedo de radícula (PHDR), el peso seco de radícula (PSDR), el índice de vigor (IDV) y la dinámica de crecimiento de la semilla. Los análisis se realizaron en infostat y excel. Los resultados mostraron que el patrón lima mandarina fue mejor a la dosis de 20,00 mgL-1. El limón rugoso fue mejor en las dosis 5,00, 10,00 y 20,00 mgL-1 y la mandarina Cleopatra a las dosis de 10,00 y 20,00 mgL-1. Respecto de la velocidad de germinación, hubo mejor respuesta del limón rugoso con 5,00 mgL-1 de polisacáridos, seguidos del limón rugoso con 10,00 mgL-1 de oligosacáridos. La aplicación del bioestimulante Pectimorf® a la semilla de lima mandarina tuvo mejor peso PHDR.

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Cómo citar
Yánez Galarza, M. G. ., & Vera Tumbaco, B. M. . (2026). Respuesta del tiempo de imbibición de semillas de tres patrones de cítricos con diferentes concentraciones de Pectimorf® en la germinación. Centrosur Agraria, 1(28), 32–44. https://doi.org/10.37959/revista.v1i28.307
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Alcívar, A., & Vera, M. (2022). Responses of seed imbibition of three citrus rootstocks with different concentrations of Pectimorf® on germination. [Thesis, Universidad Estatal del Sur de Manabí, Jipijapa, Ecuador]. https://repositorio.unesum.edu.ec/bitstream/53000/3668/1/TESIS%20Alcivar%20Alan.pdf

Bao, F., Hernández, R.M., Diosdado, E., Román, M.I., González, C., Rojas, A., & Rodríguez, A. (2013). Somatic embryogenesis of Citrus macrophylla Wester using Pectimorf® and brassinosteroid analogues. Colombian Journal of Biotechnology, 15(1), 189-194.

Borges, M., Reyes, D., Zayas, J., & Destrade, R. (2015). Effect of Pectimorf® on the in vitro rooting of FHIA-18 plants (Musa AAAB). Plant Biotechnology, 15(4), 227-232.

Calderon, H. (2018). Determination of the germination percentage of lemon seeds (Citrus limon) at different immersion times based on lemon extract (Citrus limon). University of Guayaquil, Guayaquil, Ecuador

Dominí, M. E., & Benítez, B. (2004). Use of biopreparations as rooting promoters in ficus cuttings (Ficus benjamina). Tropical Crops, 25(3). 45-48. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193217916005.pdf

Falcón Rodríguez, A.B., Costales Mené, D., González-Peña, S., Fundora, D., & Nápoles García M.C. (2015). New natural products for agriculture: oligosaccharins. Tropical Crops, 36:111–29.

Falcón-Rodríguez, A.B., Costales, D., Rogers, H.J., Diosdado, E., González, S., & Cabrera, G, et al. (2013). Practical use of oligosaccharins in agriculture. Acta Horticulturae, 1009:195-212.

Farias, S. (2019). Allelopathic effect of nettle (Urtiga dioica) and horsetail (Equisetum arvense L.) extracts on seed germination and growth of

L.B., Ortiz, R.M.H., Salcés, E.D., Gutiérrez, M.I.R., Arencibia, C.G., & Álvarez, rough lemon (Citrus jambhiri Lush) seedlings. [Thesis, National University of Tumbes, Tumbes, Peru].

Fundora, A.R., et al. (2013). Somatic embryogenesis of Citrus macrophylla Wester using Pectimorf® and brassinosteroid analogues. Colombian Journal of Biotechnology, 15(1):189–94.

Gabriel, J., Valverde, A., Indacochea, B., Castro, C., Vera, M., Alcívar, J., & Vera, R. (2022). Experimental designs: Theory and practice for agricultural experiments. Mawil, Quito, Ecuador. https://doi.org/10.26820/978-9942-602-26-8

Gabriel, J., Merchán, L., Lagos, J., Fuentes, T., Morán, J., & Burgos, G. (2024). Morphological characterisation of wild tomatoes (Solanum sp.) on the grounds of the State University of Southern Manabí, Ecuador. Centrosur Agraria, 1(23). https://doi.org/10.37959/revista.v1i23.274

Hernández, R.M., Lara, R.M., Diosdado, E., Cabrera, J.C., González, C., Valdés, M., & Xiqués, X. (2007). Evaluation of pectimorph activity in the somatic embryogenesis of Cleopatra mandarin (Citrus reshni Hort. ex Tan) using isoenzymatic markers. Tropical Crops, 28(4), 25-31. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193217894004.pdf

Jaramillo, A., Martínez, M., Cardozo, C., & Burgos, J. (2012). Determination of controlled conditions for the safe storage of 'Tahiti' sour lime rootstock seeds. Revista Corpoica - Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 13(2), 151 - 158. http://www.scielo.org.co/pdf/ccta/v13n2/v13n2a05.pdf

Jardin P. (2015). Plant biostimulants: Definition, concept, main categories and regulation. Scientia Horticulturae, 196, 3–14. doi:10.1016/j.scienta.2015.09.021

Mederos Yuliem & Hormaza J. (2008). General considerations in the obtaining, characterisation and identification of oligogalacturonide . Tropical Crops, 29(1), 83-90. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193221581013.pdf

Montes, S. (2000). Use of the bioregulator Pectimorf® in the accelerated propagation of Anthurium cubense. Tropical Crops, 21, 29-31.

Nápoles Vinent, S., Garza Borges, T., & Reynaldo Escobar, I.M. (2016). Response of the cowpea (Vigna unguiculata L.) var. Lina crop to different forms of application of pectimorf®. Tropical Crops, 37(3), 172-177.

Nieves, N., Poblete, A., Cid, M., Lezcano, Y., González-Olmedo, J., & Cabrera, J. C. (2006). Evaluation of pectimorf as a complement to 2,4-d in the process of somatic embryogenesis of sugar cane (Saccharum spp). Tropical Crops, 27(1), 25-30. https://www.redalyc.org/pdf/1932/193215885004.pdf

Núñez, M., Martínez, L., & Reyes, Y. (2018). Oligogalacturonides stimulate the growth of rice seedlings grown in saline medium. Tropical Crops, 39(2), 96-100.

Pérez, G., Peñuelas, O., Núñez, M., Martínez, L., López, I., Reyes, Y., & Argentel, L. (2021). Salt stress in rice cultivation (Oryza sativa L). Role of oligogalacturonides as plant protectors. Rev. Fitotec, 44(3), 283–291. https://revistafitotecniamexicana.org/documentos/44-3/1a.pdf

Posada-Pérez, L., Padrón-Montesinos, Y., González-Olmedo, J., Rodríguez-Sánchez, R., Barbón-Rodriguez, R., Norman-Montenegro, O., Rodríguez-Escriba, R., & Gómez-Kosky, R. (2016). Effect of Pectimorf® on the rooting and in vitro acclimatisation of papaya (Carica papaya L.) shoots, Maradol Roja cultivar. Tropical Crops, 37(3), 50-59. https://dx.doi.org/http://dx.doi.org/10.13140/RG.2.1.1642.2642

Rizo, M., Morales, D., Sánchez, T., López, O., Olivera, Y., Benítez, M., & Ruz, F. (2018). Influence of EcoMic® and Pectimorf® on the establishment of Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. cv. Cunningham. Pastos y Forrajes, 44(3), 183-188. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0864

Terry-Alfonso, E., Ruiz Padrón, J., Tejeda Peraza, T., & Reynaldo Escobar, I. (2014a). Agrobiological effectiveness of Pectimorf® bioactive product on radish (Raphanus sativus L.) crop. Tropical Crops, 35(2), 105-111.

Terry-Alfonso, E., Ruiz-Padrón, J., Tejeda-Peraza, T., Reynaldo-Escobar, I., Carrillo-Sosa, Y., & Morales-Morales, H.A. (2014b). Interaction of bioproducts as alternatives for Cuban horticultural production . Tecnociencia Chihuahua. 8(3):163–74.

Yakhin, O.I., Lubyanov, A.A., Yakhin, I.A., & Brown, P.H. (2017). Biostimulants in Plant Science: A Global Perspective. Frontiers in Plant Science., 7:2049. doi:10.3389/fpls.2016.02049

Yanez, M.G., & Vera, M. (2023). Evaluating the imbibition time of seeds from three citrus rootstocks with different concentrations of Pectimorf® on germination. [Thesis, Universidad Estatal del Sur de Manabí, Jipijapa, Ecuador]. https://repositorio.unesum.edu.ec/handle/53000/5300

Zaccardelli, M., Pentangelo, A., & Tripodi P. (2013). Characterisation of bean (Phaseolus vulgaris L.) ecotype Fagiolo Occhio Nero Di Oliveto citra using agronomic, biochemical and molecular approaches. Pakistan Journal of Biological Sciences. 2013;16(18):901–10.